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              RENJIEBIO-關(guān)于血液那些事兒:血液樣本收集/處理知多少?

              發(fā)布時(shí)間:2023-08-10   點(diǎn)擊次數(shù):2308次

              血液樣本是ELISA中最常見的生物液體樣本,其中在檢測上有全血、血清、血漿、血凝塊和血細(xì)胞的區(qū)分,ELISA常用血清和血漿。

              血液是一種流體組織,在心血管系統(tǒng)內(nèi)循環(huán)流動,起著運(yùn)輸物質(zhì)的作用。血液組織是結(jié)締組織的一種,由血漿和血細(xì)胞組成。


              血漿內(nèi)含血漿蛋白(白蛋白、球蛋白、纖維蛋白原)、脂蛋白等各種營養(yǎng)成分以及無機(jī)鹽、氧、激素、酶、抗體和細(xì)胞代謝產(chǎn)物等。血細(xì)胞有紅細(xì)胞、白細(xì)胞和血小板。


              哺乳類的血液具有凝血機(jī)制,血管破裂時(shí),血小板會結(jié)集,堵塞血管破口,此時(shí)血漿中原本可水溶的血纖維蛋白等凝固成為XUEKUAI,剩余的透明液體就叫做血清。

              從采集樣本來說,直接抽取采集的為全血,呈紅色。靜置后1-2h,會發(fā)生凝血反應(yīng),形成血清(呈黃色透明液體)和血凝塊。在收集管中提前加入抗凝劑,混勻后離心,即可分離出血漿。


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              血清和血漿樣本的主要區(qū)別在于血漿中抗凝劑和凝血因子的影響。


              多數(shù)指標(biāo)中血漿樣本可以替代血清,前提是該指標(biāo)不受抗凝劑成分和凝血因子的影響(如抗體類項(xiàng)目),但生化指標(biāo)則不可用EDTA抗凝分離血漿,因?yàn)镋DTA-K2此種抗凝劑不僅可以絡(luò)合重金屬M(fèi)g2+,也會致使K+的含量上升,故生化指標(biāo)的最佳樣本是血清。一般全血能收集到30-50%左右的血清/血漿。


              血紅蛋白類指標(biāo)需采用溶血?jiǎng)┢扑檠?xì)胞后來進(jìn)行測定,凝血因子類指標(biāo)需使用血漿,其他部分指標(biāo)血清血漿中有較大差異,血清血漿樣本類型的選取,建議多參考國內(nèi)外文獻(xiàn),選擇合適的樣本類型


              真空采血管是采血材料中裝血液標(biāo)本的試管,管內(nèi)有真空壓力,在護(hù)士采血操作穿刺達(dá)到血管后,把穿刺針另一端插入試管,血管內(nèi)的血液通過管內(nèi)真空壓力自然把血管內(nèi)的血液往試管內(nèi)排出,當(dāng)達(dá)到一定采血量后管內(nèi)的壓力自然減小,不會繼續(xù)出血。需要護(hù)士采血操作時(shí)使用,如果是事先把試管蓋打開,管內(nèi)的壓力就會改變,不是成負(fù)壓狀態(tài)就沒有真空壓力的作用。


              除紅頭管無添加外,其他采血管中均含有添加劑,需采血后顛倒混勻5/8次。血清管凝集后離心分離出血清,血漿管需要混勻后離心分離出血漿。用于ELISA測試的樣本建議于 4℃保存24h 內(nèi)完成離心分離,避免長時(shí)間存放/凍融引起血細(xì)胞破碎,發(fā)生溶血反應(yīng)影響ELISA實(shí)驗(yàn)。


              動物采血管少量采血,建議采用無菌無毒素的離心管收集,自然凝集后離心分離血清;或抗凝離心管(肝素/EDTA分離血漿),輕輕顛倒混勻后離心分離血漿。


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              大鼠/小鼠常見采血方法


              1 剪尾取血法

              將清醒鼠裝入深顏色的布袋中,將鼠身裹緊,露出尾巴,用酒精涂擦或用溫水浸泡使血管擴(kuò)張,剪斷尾尖后,尾靜脈血即可流出,用手輕輕地從尾根部向尾尖擠捏,可取到一定量的血液。取血后,用棉球壓迫止血。也可采用交替切割尾靜脈方法取血。用一鋒利刀片在尾尖部切破一段尾靜脈,靜脈血即可流出,每次可取0.3~0.5 ml,供一般血常規(guī)實(shí)驗(yàn)。三根尾靜脈可替換切割,由尾尖向根部切割。由于鼠血易凝,需要全血時(shí),應(yīng)事先將抗凝劑置于采血管中,如用血細(xì)胞混懸液,則立即與生理鹽水混合。


              2 眼球后靜脈叢取血法

              左手持鼠,拇指與中指抓住頸部皮膚,食指按壓頭部向下,阻滯靜脈回流,使眼球后靜脈叢充血,眼球外突。右手持1%肝素溶液浸泡過的自制吸血器,從內(nèi)呲部刺入,沿內(nèi)下眼眶壁,向眼球后推進(jìn)4~5 mm,旋轉(zhuǎn)吸血針頭,切開靜脈叢,血液自動進(jìn)入吸血針筒,輕輕抽吸血管(防止負(fù)壓壓迫靜脈叢使抽血更困難),拔出吸血針,放松手壓力,出血可自然停止。也可用特制的玻璃取血管(管長7~10 cm,前端拉成毛細(xì)管,內(nèi)徑0.1~1.5 mm,長為1 cm,后端管徑為0.6 cm)。必要時(shí)可在同一穿刺孔重復(fù)取血。此法也適用豚鼠和家兔。


              3 眼眶取血法

              左手持鼠,拇指與食指捏緊頭頸部皮膚,使鼠眼球突出,右手持彎鑷或止血鉗,鉗夾一側(cè)眼球部,將眼球摘出,鼠倒置,頭部向下,此時(shí)眼眶很快流血,將血滴入預(yù)先加有抗凝劑的玻璃管內(nèi),直至流血停止。此法由于取血過程中動物未死,心臟不斷跳動,一般可取鼠體重4%~5%的血液量,是一種較好的取血方法,但只適用一次性取血。


              4 心臟取血

              動物仰臥固定于鼠板上,用剪刀將心前區(qū)毛剪去,用碘酒、酒精消毒此處皮膚,在左側(cè)第3~4肋間用左手食指摸到心搏,右手持連有4~5號針頭的注射器,選擇心搏處穿刺,當(dāng)針頭正確刺入心臟時(shí),鼠血由于心臟跳動的力量,血自然進(jìn)入注射器。


              5 斷頭取血

              實(shí)驗(yàn)者帶上棉手套,用左手抓緊鼠頸部位,右手持剪刀,從鼠頸部剪掉鼠頭迅速將鼠頸端向下,對準(zhǔn)備有抗凝劑的試管,收集從頸部流出的血液,小鼠可取血0.8~1.2 ml,大鼠可取血5~10 ml。


              6 頸動靜脈、股動靜脈取血

              麻醉動物背位固定,一側(cè)頸部或腹股溝部去毛,切開皮膚,分離出靜脈或動脈,注射針沿動靜脈走向刺入血管。20 g小鼠可抽血0.6 ml,300 g大鼠可抽血8 ml。也可把頸靜脈或頸動脈用鑷子挑起剪斷,用試管取血或注射器抽血,股靜脈連續(xù)多次取血時(shí),穿刺部位應(yīng)盡量靠近股靜脈遠(yuǎn)心端。





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